A recombinant avian adeno-associated virus as a vector factor for infectious bursal disease vaccination

El virus de la enfermedad infecciosa de la bolsa es una enfermedad de distribución mundial que afecta a aves jóvenes que debe ser controlada mediante vacunación y constituye una de las preocupaciones principales de la industria avícola mundial. Los virus adeno-asociados aviares son virus no patogénicos capaces de dar cabida a porciones relativamente largas de ADN y de infectar una amplia variedad de tipos celulares. Un miembro de esta familia, el virus adeno-asociado aviar ha sido caracterizado por completo y utilizado como un vector para entrega de genes en células y tejidos de embriones de pollo. En el presente estudio se demostró mediante inmunohistoquímica y microscopia electrónica la factibilidad de generar virus adeno-asociados recombinantes expresando la proteína viral 2 del virus de la enfermedad infecciosa de la bolsa. Luego de la inoculación in ovo o intramuscular de aves libres de patógenos específicos con el virus recombinante, se observó evidencia serológica de la expresión de la proteína VP2. La utilización de virus adeno-asociado aviar recombinantes para la entrega de genes es una opción interesante para la vacunación de aves domésticas.

Infectious bursal disease is a worldwide distributed immunosuppressive disease of young chickens that need to be controlled by vaccination; it represents one of the main concerns for the poultry industry. The adeno-associated viruses are non-pathogenic viruses, capable of accommodating relatively long pieces of DNA, and of infecting a wide variety of cell types. A member of this family, the avian adeno-associated virus has been fully characterized and successfully used for gene delivery in chicken embryo tissues and cells. In this study, it was demonstrated by electron microscopy and immunocitochemistry the feasibility of generating recombinant avian adeno-associated virus (rAAAV) virions expressing the immunogenic viral protein 2 of infectious bursal disease virus (IBDV). Serological evidence of VP2 protein expression measured as IBDV specific antibody response after in ovo or intramuscular inoculation of the recombinant virus in specific pathogen free (SPF) chickens was observed. The use of rAAAV virions for gene delivery in poultry is a promising approach to poultry vaccination.

Utilización de las tarjetas FTA® para el diagnóstico molecular del virus de la enfermedad de NEWCASTLE en muestras de fluido alantoideo / Utilization of FTA® Cards for the Molecular Diagnostic of Newcastle Disease Virus in Allantoic Fluid Samples

Se evaluó la factibilidad de utilizar las tarjetas FTA® (Flinders Technology Associates) para la inactivación y transporte de fluido alantoideo infectado con el virus de la enfermedad de Newcastle (VEN). La tarjetas FTA® fueron impregnadas con diluciones seriadas de fluido alantoideo con un título inicial de 10(8,8) DL/50 del VEN cepa LaSota y analizadas mediante la prueba de reacción en cadena por la polimerasa transcriptasa reversa (por sus siglas en ingles RT-PCR) a las 24 horas, 7 y 14 días. La concentración más baja del virus detectada en el fluido alantoideo fue 10(5,8) DL/50. La detección del virus a partir de la tarjeta fue posible hasta 14 días después de su inactivación. El re-aislamiento viral en huevos embrionados a partir de las tarjetas resultó negativo. La inactivación del virus en las tarjetas no afectó la calidad de la secuencia de nucleótidos, permitiendo la determinación de su virulencia mediante la secuenciación de los nucleótidos que codifican la zona de corte de la proteína de fusión resultando ser lentogénico en concordancia con la cepa inicial de virus aplicada a las tarjetas. Se concluye que las tarjetas FTA® representan una alternativa válida para el muestreo, inactivación y diagnóstico molecular del VEN, con un alto grado de bioseguridad.

The feasibility of using FTA® cards (Flinders Technology Associates) for inactivation and transportation of allantoic fluid infected with Newcastle disease virus (NDV) was evaluated. Serial dilutions of allantoic fluid with a titer of 10(8.8) ELD/50 of LaSota strain NDV were loaded on the FTA® cards and analyzed after 24 hour, 7 and 14 days using reverse transcriptase-polimerase chain reaction (RT-PCR). The lowest virus concentration that could be detected from the FTA® cards was 10(5.8) ELD/50. The detection of the inactivated virus was possible after 14 days of virus inactivation. No virus re-isolation in embryonating eggs was possible from the cards. No negative effects of the FTA® card inactivation on the nucleotide sequences were observed, allowing the determination of its virulence by direct nucleotide sequencing of the F protein cleavage site, resulting in a lentogénic strain in concordance with the initial virus applied on the cards. It can be conclude that FTA® cards are a valid alternative for NDV sampling, inactivation and molecular diagnostic with a high degree of biosecurity.